综述:外泌体样纳米囊泡(ENVs)的分离、表征及生物学应用研究进展

【字体: 时间:2025年10月02日 来源:Food Chemistry 9.8

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  本综述系统探讨了外泌体样纳米囊泡(ENVs)的分离技术(如差速超速离心法、尺寸排阻色谱法)、表征手段(如TEM、AFM、NTA)及其多重生物活性(抗炎、抗氧化、抗肿瘤等)。文章强调ENVs作为新型药物载体的潜力,并指出未来需突破高纯度低成本分离技术、标准化评价体系等挑战,为食品医药领域应用提供重要参考。

  
Animal-derived exosome-like nanovesicles
动物源外泌体样纳米囊泡(AENVs)最早于1983年从绵羊红细胞中发现。研究表明,干细胞、树突状细胞、肿瘤细胞等均可分泌ENVs,其通过表面蛋白质、脂质和遗传物质介导细胞间通讯,在免疫调节和疾病发展中发挥关键作用。
Differential ultracentrifugation method
差速超速离心法是通过逐步提高离心速度分离不同粒径颗粒的最常用技术。该方法成本低且操作简便,但可能因剪切力导致囊泡结构损伤,需结合其他纯化技术提升分离纯度。
Morphology
扫描电镜(SEM)和透射电镜(TEM)可直观呈现ENVs的球形膜结构,低温电镜(Cryo-TEM)能更好保留天然形态,原子力显微镜(AFM)则可三维表征表面拓扑特征。这些技术共同揭示ENVs的粒径分布(40-160 nm)和形态异质性。
Lipids
ENVs的脂质组成包含磷脂、鞘脂和胆固醇等,其比例因来源差异显著。脂质不仅构成囊泡双分子层结构,还参与信号传导和免疫调节,例如通过脂筏微域介导膜融合过程。
Anti-inflammation activity
ENVs(尤其植物源PENVs)可通过调节肠道菌群和抑制炎症通路(如NF-κB)显著缓解肠道炎症。例如大蒜源ENVs能降低TNF-α和IL-6等炎性因子水平,展现治疗炎症性肠病的潜力。
Summary and Prospects
当前ENVs研究面临分离纯度低、表征标准化不足等挑战。未来需开发低成本规模化生产技术,建立统一质量评价体系,并深入探索其跨物种穿屏障机制,以推动其在功能性食品和精准医疗领域的应用。
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