家用洗衣机微生物交叉污染与微生物生态学研究：用户特异性菌群、机会致病菌传播及洗涤实践的健康启示

《Frontiers in Microbiology》：Microbial cross contamination in household laundering and microbial ecology of household washing machines

　　本综述系统研究家用洗衣机微生物生态，揭示其作为机会致病菌储存库的潜在风险。通过16S rRNA/ITS宏条形码技术发现，前装式洗衣机微生物载量显著高于顶装式（细菌计数：6.50±2.46 vs 3.79±1.73 Log10/拭子），微生物群落构成主要受用户习惯而非机型驱动。研究证实标准洗涤程序难以完全消除病原体，特别对免疫缺陷人群存在感染风险，为家庭洗衣消毒策略优化提供科学依据。

　　

引言部分

家用洗衣机在发达国家家庭普及率超过80%，既是维持卫生的重要工具，又可能成为微生物（包括潜在病原体）的储存库，具有显著的公共卫生意义。洗衣机内部适宜的温度、潮湿环境和pH值为微生物生长提供了理想条件，其微生物群落结构受机器类型、使用频率、水源和用户习惯等多因素影响。近年研究发现洗衣机中普遍存在假单胞菌属（Pseudomonas）、不动杆菌属（Acinetobacter）和富盐菌属（Enhydrobacter）等微生物，这些机会致病菌可能通过衣物传播，对居民和医疗环境构成感染风险。然而，关于烘干过程对微生物群落影响的研究仍属空白。

材料与方法

研究选取10台家用洗衣机（5台前装式、5台顶装式），通过表面拭子采样和无菌标记毛巾两种方式收集样本。表面采样针对机器内部热点区域（如前装式的橡胶门封、 detergent drawer area，顶装式的滚筒垫圈、搅拌器轴心等），使用磷酸盐缓冲盐水（PBS）湿润的拭子进行标准化采样。标记毛巾实验设置两种条件：单独洗涤与脏衣物混合洗涤，并评估烘干程序（56.53°C高温处理30分钟）对微生物的影响。

样本通过培养法（Tryptic Soy Agar和Hardy Malt Extract Agar）和分子生物学方法（16S rRNA/ITS宏条形码）进行分析。DNA提取采用ZymoBIOMICS系列试剂盒，测序在Illumina MiSeq平台完成。生物信息学分析使用DADA2流程生成扩增子序列变异（ASVs），并通过QIIME等工具进行多样性分析和病原性评估（采用Microbe Directory数据库的致病性评分系统）。

结果分析

微生物载量数据显示，前装式洗衣机细菌载量显著高于顶装式（6.50±2.46 vs 3.79±1.73 Log₁₀/拭子），其中门封和 detergent drawer区域载量最高。真菌群落以曲霉属（Aspergillus）、枝孢霉属（Cladosporium）和青霉属（Penicillium）为主。标记毛巾实验表明，烘干程序未显著降低微生物存活率，而脏衣物的加入会改变群落结构。

微生物群落组成显示，细菌优势菌属包括假单胞菌属（Pseudomonas）、微球菌属（Micrococcus）和鞘氨醇单胞菌属（Sphingomonas），真菌以马拉色菌属（Malassezia）和红酵母属（Rhodotorula）为主。Beta多样性分析表明，微生物群落差异主要与用户个体特征相关（p=0.003），而非采样位置或机型。

机会致病菌筛查发现，样本中存在致病性评分2级的潜在病原体（如铜绿假单胞菌Pseudomonas aeruginosa和表皮葡萄球菌Staphylococcus epidermidis），但未检测到3级高致病性微生物。值得注意的是，马拉色菌globosa（Malassezia globosa）在60%样本中高丰度存在。

讨论与结论

本研究证实家用洗衣机携带用户特异性微生物群落，前装式机型因结构特性（存水设计）更易滋生微生物。当前洗涤实践对机会致病菌的清除效果有限，特别是对免疫缺陷人群存在潜在风险。建议采取辅助消毒策略（如高温程序、专用消毒剂）并加强机器内部清洁。未来研究需结合用户健康信息、水质参数等变量，进一步量化洗衣过程的感染风险及病原体传播机制。

这项研究为家用电器微生物风险评估提供了新视角，对公共卫生政策制定和个体防护实践具有重要指导意义。