综述:CRISPR技术在病原体检测中的应用进展:基于扩增与免扩增策略
《Frontiers in Cellular and Infection Microbiology》:Advances in the application of CRISPR technology in pathogen detection: amplification-based and amplification-free strategies
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时间:2025年11月04日
来源:Frontiers in Cellular and Infection Microbiology 4.8
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这篇综述系统阐述了CRISPR(簇规律间隔短回文重复序列)技术在病原体检测领域的最新进展,重点对比了基于扩增(如结合RPA/LAMP等温扩增)与免扩增(级联CRISPR、传感器技术、数字液滴CRISPR)两类策略的原理与性能。文章深入分析了该技术在病毒(SARS-CoV-2、HPV等)、细菌(结核分枝杆菌、MRSA等)及真菌寄生虫检测中的临床应用,并探讨了其灵敏度、特异性、操作便捷性等优势与局限,为病原体快速诊断技术的优化提供了重要理论参考。
在病原体检测领域,微生物培养作为实验室检测的"金标准"虽能确定微生物活性,但耗时长达2-10天,且对技术要求和生物安全防护要求高。免疫检测中抗原检测主要用于感染早期,而抗体检测在感染初期阳性率较低(约27%-41%)。传统PCR技术(如qPCR)灵敏度高但检测时间长,对设备人员要求严苛。近年来,等温扩增技术(RPA、LAMP等)虽消除了对热循环的依赖,但存在非特异性扩增等问题。CRISPR系统及其相关Cas蛋白的出现为分子诊断带来了革新。自1987年发现以来,CRISPR被确认为细菌的适应性免疫机制,其通过crRNA引导识别特定核酸序列实现病原检测。CRISPR系统主要分为六型,其中II、V和VI型在基因编辑和病原检测中应用最广。
CRISPR系统以其卓越的特异性和灵活性,在各种生物体中实现精确基因编辑。以Cas9为例,其免疫激活机制包含外源基因片段插入、crRNA引导复合物形成、靶向切割等步骤。关键特性在于Cas蛋白在特异性切割后展现非特异性切割活性:Cas9、Cas12a、Cas14(Cas12f)切割单链DNA(ssDNA),Cas13切割单链RNA(ssRNA),这一现象称为反式切割活性。研究人员利用该原理开发CRISPR体外诊断技术,通过设计特异性crRNA引导CRISPR复合物结合靶标,切割带有荧光信号(FAM、ROX等)和淬灭基团(BHQ)的报告分子实现检测。侧流层析试纸条(LFA)技术的引入进一步拓展了CRISPR在即时检测(POCT)中的应用潜力。
根据应用方法,CRISPR技术主要分为基于扩增的CRISPR和免扩增CRISPR两大类。基于扩增的策略通过RPA、LAMP、多重交叉置换扩增(MCDA)等核酸扩增技术提升检测灵敏度,如RPA与CRISPR-Cas12a结合可在30分钟内实现Mpox病毒DNA的检测,灵敏度达1拷贝。免扩增策略则直接检测病原体,减少操作步骤,如CRISPR-Cas13a系统可直接结合RNA靶标产生信号,在HIV-1病毒检测中展现良好性能。
典型代表SHERLOCK技术聚焦CRISPR-Cas13系统,通过RPA扩增和T7介导的逆转录转录激活系统,在临床样本中展现100%灵敏度和特异性。DETECTR技术基于CRISPR-Cas12系统,主要用于DNA检测。但两步法需人工转移扩增产物,增加操作复杂性和气溶胶污染风险。
通过物理分隔(双层反应管、离心混合设计)或反应条件优化(动态水相多相反应系统DAMR)实现扩增与CRISPR反应整合。例如,利用石蜡分隔RAA和CRISPR-Cas12a系统,灵敏度达2.5×100拷贝/μL。温度兼容性策略如LAMP与Cas12b(58°C)组合,以及亚优化PAM(VTTV、TCTV等)的应用,有效降低Cas12a顺式切割活性。光控一锅法通过光裂解连接子调控crRNA活性,为一体化检测提供新思路。
通过多crRNA策略(灵敏度提升6-64倍)或核酸电路信号放大(如U富集发夹结构URH、双链激活循环DSAC系统)增强信号。例如,Cas12a介导的级联切割增强方法(TCC)可在40分钟内检测低至1.2 CFU/mL的病原体。但级联策略存在crRNA设计复杂和假阳性风险。
石墨烯场效应晶体管(gFET)通过Cas13a切割PolyU20报告分子引起电荷中性点电压(VCNP)变化,实现aM级检测;电化学生物传感器(ECL)利用亚甲蓝(MB)或二茂铁(Fc)氧化还原信号检测HPV、SARS-CoV-2等病原;表面增强拉曼散射(SERS)技术通过纳米颗粒信号变化实现1 fM灵敏度检测。各类传感器在成本、稳定性和操作复杂性上各有特点,未来材料科学进步将推动其实际应用。
通过微滴技术实现单分子水平定量,如STAMP数字CRISPR-Cas13a检测HIV-1 RNA灵敏度达2000拷贝/mL。简单涡旋生成10-100 μm油相微滴的方法降低设备依赖,适合资源有限环境下的POCT应用。
STOPCovid.v1整合磁珠提取、LAMP和LFA,1小时内检测SARS-CoV-2(灵敏度93.1%);三crRNA免扩增CRISPR-Cas13a系统结合手机显微镜实现30拷贝/μL灵敏度;SATORI自动化数字液滴平台9分钟检测SARS-CoV-2和流感病毒;Cas-Roller方法可检测埃博拉病毒至291 aM。
CRISPR-Cas12a系统用于HPV分型检测(灵敏度1拷贝/μL)和HBV检测(SERS法灵敏度0.67 pM);Cas14a级联比色法可区分2-nt差异的ASFV变异株。值得注意的是,Cas13检测DNA需通过T7转录将DNA转化为RNA。
CRISPR-MCDA技术70分钟检测结核分枝杆菌(灵敏度5 fg/μL);免扩增ECL检测MRSA的mecA基因;多信号输出CPF-CRISPR生物传感器实现MRSA多模式检测;OR门控逻辑的级联正反馈系统可同步检测MSSA、MRSA、大肠杆菌和HBV,显著降低成本。
针对白色念珠菌的检测灵敏度达30 CFU/mL;CRISPR-Cas12技术20分钟鉴定疟原虫种类;CRAFT平台整合核酸提取、RPA和CRISPR反应,实现肺炎支原体快速检测。
基于扩增的策略灵敏度高(可达1拷贝/μL),但存在污染风险;免扩增策略特异性更优,检测时间可缩短至5分钟。目前基于扩增的方法已广泛应用,而免扩增策略在真菌、寄生虫等检测中尚处探索阶段。临床应用中,样本基质复杂性、设备集成和结果标准化仍是挑战。成本方面:基于扩增策略每个检测试剂成本约0.84美元,免扩增策略虽节省试剂但设备投入较高。未来发展方向包括简化样本前处理、提高设备便携性/自动化、实现多重检测。微流控技术与CRISPR的结合,以及便携设备(如温度计集成平台)和全自动数字液滴系统(SATORI)的发展,将推动该技术在POCT和资源有限场景中的应用。
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