枯草芽孢杆菌驱动砾石土壤改良与高羊茅促生:微生物-植物互作机制解析
《Microbial Ecology》:Microbial-Plant Interaction: Bacillus subtilis–Driven Gravel Soil Improvement and Growth Promotion of Festuca arundinacea
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时间:2025年11月27日
来源:Microbial Ecology 4
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本研究针对隧道工程产生的贫瘠砾石土壤生态修复难题,探讨了枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)通过调控土壤微生物群落结构与功能,提升高羊茅(Festuca arundinacea)生长性能的机制。通过温室盆栽实验发现,枯草芽孢杆菌可显著提高土壤有效磷(AP)、有效钾(AK)含量及蔗糖酶(S-SC)、脲酶(S-UE)活性,促进高羊茅地上/地下生物量积累,并重塑以鞘氨醇单胞菌(Sphingomonas)为优势属的微生物群落。该研究为高寒区工程废弃地的生态修复提供了微生物-植物协同增效的新策略。
随着我国隧道工程在高寒地区的快速推进,大量爆破产生的砾石土壤堆积成山,这些土壤结构松散、养分匮乏、微生物多样性极低,严重制约植被恢复与生态安全。高羊茅虽具抗逆性强、根系发达等优势,但在贫瘠砾石土壤中仍难以自然定植。如何通过人工干预实现此类工程废弃地的可持续生态修复,成为亟待解决的科学问题。
为解决这一难题,成都理工大学研究团队在《Microbial Ecology》发表最新研究,通过温室盆栽实验,系统评估了枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)对高羊茅生长、土壤养分循环及微生物群落结构的调控作用。实验设置对照组(CK)、营养液添加组(LB)和枯草芽孢杆菌接种组(Bs),通过测定土壤理化性质、酶活性、植物生物量及16S rRNA测序等技术,揭示了微生物-植物互作的内在机制。
研究采用温室盆栽实验,以隧道爆破产生的砾石土壤为基质,设置CK、LB(添加LB培养基)和Bs(接种108 CFU/mL枯草芽孢杆菌)三组处理。通过连续流动分析仪测定土壤养分,ELISA法检测土壤酶活性,Illumina NovaSeq平台测序分析细菌群落结构,并结合方差分析与Mantel检验评估植物-土壤-微生物关联性。
3.1. 不同处理下砾石土壤养分动态变化
研究发现,Bs处理显著提升土壤有效磷(AP)和有效钾(AK)含量,分别较CK组增加60.89%和28.60%,而LB组仅分别增加18.59%和5.06%。此外,Bs处理使土壤pH呈下降趋势,有机碳(SOC)含量提升28.60%,但硝态氮(NO3--N)含量降低48.35%,可能与砾石土壤养分淋失有关。
3.2. 不同处理下砾石土壤酶活性变化
Bs处理显著增强蔗糖酶(S-SC)和脲酶(S-UE)活性,但碱性磷酸酶(ALP)活性降低67.44%,推测与枯草芽孢杆菌招募的微生物抑制ALP活性有关。LB组则通过直接补充营养提升ALP活性25.82%。
3.3. 不同处理下植物生长变化
Bs处理使高羊茅地上生物量和地下生物量分别增加102.75%和77.52%,根冠比显著降低,表明其通过改善根际微环境优先促进地上部生长。LB组虽提升生物量,但根冠比增加,可能与铵态氮(NH4+-N)胁迫下资源向根部倾斜有关。
3.4. 土壤微生物群落特征变化
Bs处理显著提高细菌群落Simpson指数,且PCoA分析显示群落结构明显区分。在属水平上,LB组以固氮菌(Azotobacter)为主(8.99%),而Bs组以鞘氨醇单胞菌(Sphingomonas)为优势属(3.14%),表明枯草芽孢杆菌通过资源竞争调控微生物群落组成。
3.5. 植物-土壤-微生物关系
Mantel检验显示,Bs处理中蔗糖酶(S-SC)、有效磷(AP)与植物生物量显著正相关,证实枯草芽孢杆菌通过驱动碳磷循环直接促进植物生长。
本研究明确枯草芽孢杆菌可通过分泌有机酸活化土壤磷钾养分、调控酶活性与微生物群落结构,显著提升高羊茅在砾石土壤中的适应性。相较于传统营养添加,微生物接种更可持续地改善土壤肥力,为高寒区工程废弃地的生态修复提供了低成本、高效的技术路径。未来需进一步优化菌剂施用条件,并解析枯草芽孢杆菌代谢产物与土著微生物的互作机制。
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