西南大西洋首个珊瑚精子冷冻存储库:助力珊瑚礁保护的工具

《Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems》:First Frozen Repository for Coral Sperm in the Southwestern Atlantic: A Tool to Support Reef Conservation

【字体: 时间:2025年12月02日 来源:Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems 2.2

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  珊瑚礁遗传多样性保护与精子冷冻技术优化。针对巴西西南大西洋特有礁石珊瑚Mussismilia harttii因气候变化导致的严重种群衰退问题,本研究成功开发并验证了首套适用于该物种的精子冷冻保存方案。通过比较DMSO与甲醇作为冷冻保护剂(浓度10%、15%、20%)及慢速冷冻与超快速冷冻技术,发现20% DMSO配合慢速冷冻能保持最高29.7%的精子活力(83.6%存活率)且完全维持受精能力。该技术使南大西洋首个珊瑚精子库(存储2.4亿活力精子)得以建立,为珊瑚礁恢复提供关键遗传资源。

  

摘要

珊瑚礁是地球上生物多样性最丰富的生态系统之一,但由于气候变化和其他人为压力因素,它们正在迅速衰退。种群数量的减少威胁到了固着珊瑚物种的有性繁殖,因为珊瑚群体之间的距离增加阻碍了配子的相遇。一旦种群数量降至临界阈值以下,即使压力因素被消除,自然恢复也可能变得不可能。因此,珊瑚种质的生物保存已成为保护遗传多样性和支持珊瑚礁恢复的关键策略。本研究开发并验证了一种用于巴西特有造礁珊瑚Mussismilia harttii精子的冷冻保存方案,这是西南大西洋珊瑚保护领域的一个里程碑。精子被暴露在10%、15%和20%浓度的二甲基亚砜(DMSO)和甲醇(MeOH)中,并经历了受控的缓慢冷冻和超快速冷冻过程。解冻后的分析评估了精子的活动能力、线粒体活性和存活率。最佳结果是在20% DMSO和受控缓慢冷冻条件下获得的,活动率为29.7%±0.84%,存活率为83.6%±2.2%。线粒体活性(MTT检测)在15% MeOH条件下更高(1.63±0.17),而DMSO条件下为0.74±0.17)。经过冷冻保存的精子(20% DMSO + 缓慢冷冻)的受精率为100%,与新鲜精子相当(p = 0.4533)。这一优化方案使得在南大西洋建立了第一个珊瑚精子库,目前该库储存了24亿个活的M. harttii精子。这个精子库为保护遗传多样性、加强辅助繁殖计划以及提升巴西珊瑚礁的长期保护和恢复能力提供了重要资源。

1 引言

由于气候变化导致的海洋温度升高(Hughes等人,2019),再加上局部压力因素(如营养污染、沉积物和化学污染物),珊瑚礁正经历前所未有的衰退。这些因素破坏了珊瑚与甲藻之间的关键共生关系,加剧了白化事件(Johnson等人,2022)。大规模白化的频率和严重程度不断增加,导致珊瑚死亡率上升,降低了整个珊瑚礁生态系统的栖息地复杂性和生物多样性(Hoegh等人,2018;Leggat等人,2019)。这些环境压力因素还影响了珊瑚的繁殖过程,影响了配子的生成和产卵同步性(Hagedorn等人,2016)。随着自然恢复机制越来越受到破坏,迫切需要采取积极的干预措施,特别是对于特有造礁物种(Pires等人,1999;Bostr?m-Einarsson等人,2020)。

在新兴的保护技术中,配子冷冻保存技术在保护遗传多样性和支持恢复工作方面显示出特别的前景。随着首次成功地在Fungia scutaria中实现珊瑚精子冷冻保存(Hagedorn等人,2006),这一领域取得了显著进展。后续的研究为超过45种印度-太平洋和加勒比海的珊瑚物种(涵盖12个属)制定了保存方案(Hagedorn等人,2019;Howells等人,2022)。虽然使用DMSO和缓慢冷冻的标准方案已被证明对许多物种有效(Hagedorn等人,20062019),但仍需进一步优化以应对不同珊瑚类群之间的差异(Howells等人,2022)。

巴西独特的珊瑚生态系统面临着特殊的挑战。作为南大西洋唯一的珊瑚礁,这里栖息着一些特有物种,包括属于Mussismilia属的关键造礁珊瑚(Mussismilia braziliensisMussismilia harttiiMussismilia hispidaMussismilia leptophylla)(Le?o等人,2019)。尽管这些珊瑚表现出一定的气候适应性(Godoy等人,2021),但在2019年的白化事件后,特有物种M. harttii遭受了严重的损失(群体面积减少了33.8%–85.2%)(Braz等人,2022),威胁到了生态系统的稳定性(Alvarez-Filip等人,2011)。

本研究通过开发首个针对M. harttii的优化冷冻保存方案来应对这些保护挑战,确定了关键参数,包括冷冻保护剂的选择、浓度优化和冷冻技术,以保护这一生态上至关重要的物种。

2 方法

2.1 珊瑚采集与许可

在巴西巴伊亚州Recife de Fora海洋公园的Funil地点(16°24′31″S;038°58′39″W)采集了50个M. harttii珊瑚群体(n = 50)(见图1),采集许可证编号为SISBIO N° 63368-1。采集工作于2019年9月进行,此时距离该物种的预期产卵期还有两周(Pires等人,19992016)。采集的珊瑚群体直径为11.8±4.0厘米,被放置在1000升的容器中(温度为25.4°C±0.8°C),这些容器通过半开放式系统与海洋相连,位于Coral Vivo研究基地。

详情见图片下方标题
图1
Recife de Fora海洋公园的采集地点(16°24′31″S;038°58′39″W—巴伊亚州,南大西洋)。

2.2 卵子-精子束的采集与配子分离

实验在产卵期间进行了三个晚上。为了避免配子污染,每个珊瑚群体被单独放在一个碗中以便监测(Godoy等人,2021)。从表面收集了20个来自10个不同群体的卵子-精子束(n = 20),并将其转移到含有10毫升过滤海水(FSW,粒径0.22微米)的50毫升试管中(n = 10个试管/组)。分离后,漂浮的卵子被转移到新的试管中,并用于另一个实验。聚集在底部的精子(10毫升)被转移到15毫升的圆锥形试管中,使用FANEM Mod. 208N离心机在22°C下以822G的离心力离心10分钟。取出一部分新鲜精子(n = 18)用于活动能力和膜完整性分析(见支持信息—表S1S2)。离心后,精子沉淀物被重新悬浮在FSW中,并调整至最终工作浓度为6.6±2.8×106精子/毫升。这个浓度是原始新鲜精子浓度(6.6±3.3×108/毫升)的标准化稀释值,旨在平衡冷冻保护剂的毒性、冷冻管中的体积限制以及预期的解冻存活率。所有处理组的浓度都进行了标准化,以便进行比较并确保冷冻保护剂的一致性暴露。总共将2毫升含有精子的液体转移到微管中,用于分析精子的活动能力和浓度(Godoy等人,2021)。为了评估膜完整性,根据Blom的方法(Blom,1950),用伊红/尼格罗辛染色法对精子样本进行了处理,以检测膜损伤情况。

2.3 精子冷冻保存与实验设计

在单独评估每个样本后,从三个群体中获得了精子样本,并将其分配到不同的冷冻保存处理组中。实验设计采用了2×3×2的因子方案,使用了两种可渗透膜的冷冻保护剂(甲醇或二甲基亚砜);三种不同的浓度(10%、15%和20%);以及两种冷冻保存技术(缓慢冷冻或超快速冷冻)。

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