外泌体TACSTD2通过调控糖酵解促进卵巢癌侵袭转移的机制研究
《Hormones & Cancer》:Exosomal TACSTD2 promotes invasion, metastasis and glycolysis in ovarian cancer
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时间:2025年12月04日
来源:Hormones & Cancer
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本研究针对卵巢癌高死亡率及缺乏有效早期诊断标志物的临床难题,聚焦肿瘤来源外泌体在癌症进展中的作用机制。研究人员通过生物信息学筛选结合实验验证,首次揭示TACSTD2在卵巢癌外泌体中高表达,并通过ERBB2/PI3K/AKT/FOXO1信号通路调控糖酵解过程(关键酶HK2、PKM2、GLUT1、LDHA表达上调),显著促进卵巢癌细胞增殖、迁移和侵袭能力。动物实验进一步证实外泌体TACSTD2可加速腹腔转移。该研究为卵巢癌的早期诊断提供了新型液体活检标志物,并为开发靶向外泌体的治疗策略奠定了理论基础。
卵巢癌作为妇科恶性肿瘤中死亡率最高的癌种,每年导致数万女性死亡。由于缺乏早期特异性症状和有效诊断手段,超过70%的患者确诊时已处于晚期阶段,伴有广泛腹膜转移和大量腹水,五年生存率不足25%。尽管靶向治疗和免疫治疗等新疗法不断涌现,但卵巢癌的治疗选择仍然有限。在这一严峻背景下,肿瘤微环境(TME)中的细胞间通讯机制成为研究热点,其中外泌体作为携带生物活性分子的纳米级囊泡,在肿瘤进展中扮演着关键角色。
肿瘤细胞分泌的外泌体能够通过"归巢效应"特异性靶向亲代癌细胞,影响肿瘤增殖、耐药和转移过程。然而,外泌体在卵巢癌中的具体作用机制尚不明确。为此,研究人员在《Discover Oncology》上发表了最新研究成果,系统探讨了外泌体TACSTD2在卵巢癌进展中的功能机制。
研究团队采用多组学技术整合分析,主要关键技术包括:从TCGA、GEO数据库获取卵巢癌基因表达谱并与ExoCarta数据库的外泌体基因交集筛选;通过GEPIA进行生存分析;使用卵巢癌细胞系(SKOV3、OVCAR3、A2780)和患者腹水样本进行Western blot、PCR验证;构建基因敲低和过表达细胞模型进行功能实验;采用转录组学分析(GSEA)预测信号通路;建立小鼠腹腔移植瘤模型进行体内验证。
通过对GEO(GSE7463、GSE12470)和TCGA数据库的分析,筛选出131个外泌体相关差异表达基因(DEGs)。生存分析显示CLDN4、KRT7和TACSTD2高表达与患者不良预后显著相关。TACSTD2在多种实体瘤(包括卵巢癌、乳腺癌和膀胱癌)中异常高表达,且在卵巢癌组织中的表达水平显著高于正常组织。
基因集富集分析(GSEA)提示TACSTD2高表达与细胞外囊泡生物发生、ERBB2信号通路、PI3K/AKT信号通路和糖酵解过程相关。蛋白互作网络预测TACSTD2可能通过ERBB2调控PI3K/AKT通路。
实验验证显示TACSTD2在卵巢癌组织和细胞系中均显著高表达。透射电镜(TEM)和动态光散射(DLS)确认从细胞上清和患者腹水中成功分离出外泌体,Western blot检测到外泌体标志物CD9、CD63和TSG101。
通过慢病毒转染构建TACSTD2敲低和过表达的卵巢癌细胞模型。CCK-8实验表明,过表达外泌体TACSTD2显著促进细胞增殖,而敲低TACSTD2则抑制增殖。
划痕实验和Transwell实验证实,过表达外泌体TACSTD2显著提升卵巢癌细胞的迁移和侵袭能力,相反,敲低TACSTD2则抑制这些恶性表型。
代谢检测显示,外泌体TACSTD2过表达组葡萄糖摄取、ATP生成和乳酸产量显著增加,糖酵解关键酶(HK2、PKM2、GLUT1、LDHA)表达上调。使用糖酵解抑制剂2-DG可逆转TACSTD2的促癌作用。
7. ERBB2/PI3K/AKT/FOXO1信号通路机制
Western blot分析显示,外泌体TACSTD2调控ERBB2、p-PI3K、p-AKT和p-FOXO1的磷酸化水平。PI3K抑制剂LY294002可逆转TACSTD2过表达引起的通路蛋白激活。
小鼠腹腔移植瘤模型显示,注射TACSTD2过表达外泌体组肿瘤生长和腹腔转移显著加速,活体成像显示更强的生物发光信号,肿瘤重量和体积明显增大。
研究结论表明,外泌体TACSTD2作为卵巢癌的新型生物标志物,通过激活ERBB2/PI3K/AKT/FOXO1信号轴和重编程糖酵解代谢,驱动肿瘤恶性进展。这一发现不仅深化了对卵巢癌转移机制的理解,也为开发靶向外泌体的诊断方法和治疗策略提供了重要理论依据。尽管研究存在临床样本量有限等局限性,但为后续开展多组学分析和外泌体靶向治疗奠定了坚实基础。
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