NDR2通过调控LC3与ATG9A介导的自噬体生成促进饥饿条件下非小细胞肺癌细胞迁移
《Cell Death Discovery》:NDR2 regulates non-small cell lung cancer cell migration under starvation by supporting autophagosome biogenesis through LC3 and ATG9A regulation
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时间:2025年12月14日
来源:Cell Death Discovery 7
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本研究针对非小细胞肺癌(NSCLC)在营养匮乏微环境中高迁移性的调控机制展开探索。研究人员发现Hippo激酶NDR2在血清剥夺条件下通过调控LC3表达和ATG9A的亚细胞定位,促进自噬体生物发生,进而维持高尔基体功能完整性,最终驱动NSCLC细胞的定向迁移。该研究揭示了NDR2-ATG9A轴在肿瘤代谢应激响应中的新功能,为靶向自噬相关转移途径提供了理论依据。
肺癌是全球癌症相关死亡的主要原因,其中非小细胞肺癌(NSCLC)占病例的绝大多数。肿瘤微环境常常面临营养匮乏的挑战,如血清剥夺,癌细胞通过激活自噬等生存机制来适应这种应激条件。自噬是一把双刃剑:在肿瘤发生早期,它通过清除受损细胞器发挥抑制作用,但在已形成的肿瘤中,尤其是在缺氧、代谢应激等条件下,自噬却能够促进肿瘤的生长和转移。NSCLC的一个显著特征是具有高水平的基底自噬活性,这与其进展和不良预后相关。同时,Hippo信号通路的异常活化,特别是其下游效应器如 transcriptional co-activator with PDZ-binding motif (TAZ) 和 Yes-associated protein 1 (YAP-1) 的激活,在NSCLC的侵袭和转移中扮演着关键角色。核Dbf2相关激酶2(NDR2)作为Hippo通路的一员,已被证实在乳腺癌等多种癌症中介导自噬和肿瘤进展,并促进NSCLC脑转移的形成。然而,NDR2在NSCLC自噬调控中的具体作用,特别是在营养应激条件下如何影响癌细胞迁移,仍是一个未被充分阐明的领域。这引出了一个核心科学问题:在饥饿应激下,NDR2是否以及如何通过调控自噬来驱动NSCLC细胞的迁移行为?为了解决这个问题,由Guénaelle Levallet团队领导的研究在《Cell Death Discovery》上发表了他们的最新发现。
研究人员主要运用了以下关键技术:利用人支气管上皮肿瘤细胞(HBEC)系(H2030, H2030-BrM3, H1299)进行体外模型构建;通过小干扰RNA(siRNA)和短发夹RNA(shRNA)敲低NDR2和ATG9A表达;采用蛋白质免疫印迹(Western blot)、实时定量PCR(RT-PCR)和免疫荧光技术分析蛋白和基因表达及定位;使用氯喹(CQ)抑制自噬流;通过CYTO-ID?染色和透射电子显微镜(TEM)观察自噬体和细胞超微结构;利用伤口愈合实验分析细胞迁移能力和高尔基体定向;并对45例NSCLC患者(25例非转移性,20例转移性)的肿瘤组织样本进行免疫组织化学(IHC)分析。
研究人员首先发现,24小时的血清剥夺(FBS starvation)能够诱导HBEC细胞自噬,但并未引起细胞凋亡,仅导致细胞增殖减缓。在mRNA水平上,血清剥夺对NDR1和NDR2的表达没有显著影响。然而,在蛋白质水平上,血清剥夺显著降低了NDR1的表达,却稳定甚至增加了NDR2的蛋白水平。当使用siRNA或shRNA敲低NDR2后,即使在血清剥夺条件下,NDR1的蛋白水平也进一步下降,表明NDR2的缺失无法由NDR1功能代偿。进一步研究表明,血清剥夺条件下NDR2的激活可能不依赖于经典的Hippo激酶MST1/3(因为它们的表达被抑制),而是通过非经典途径调控YAP-1的活性。
NDR2通过增加LC3-II水平促进HBEC自噬诱导
为了探究NDR2在自噬中的作用,研究人员使用了自噬溶酶体融合抑制剂氯喹(CQ)。结果显示,CQ处理增加了自噬体的积累,而血清剥夺进一步增强了这一效应。然而,NDR2的敲低显著减少了在基础条件下、CQ处理后以及血清剥夺+CQ联合处理下的自噬体数量。对自噬关键标志物微管相关蛋白轻链3(LC3)的分析表明,NDR2敲低降低了LC3的mRNA和蛋白水平(包括LC3-I和LC3-II),并减少了LC3斑点的形成。值得注意的是,NDR2敲低并未改变LC3-II与LC3-I的比值,说明NDR2不影响LC3的脂化过程,而是可能调控LC3的总体表达水平。在24小时血清剥夺的时间动力学实验中,对照细胞中LC3和LC3-II水平在初期(3小时)下降后出现回升,而NDR2敲低细胞的这种回升延迟且水平较低。此外,NDR2敲低影响了自噬底物SQSTM1/p62的蛋白水平,但其效应因细胞系而异。这些数据表明,NDR2参与调控血清剥夺诱导的自噬,特别是通过影响LC3的表达。
NDR2敲低导致HBEC细胞中出现大的空泡状结构,LysoTracker染色和透射电镜(TEM)证实这些结构主要是溶酶体以及未降解的超密聚集体。这表明NDR2的缺失破坏了溶酶体的运输和/或与自噬体的融合,导致货物降解受阻。免疫荧光显示NDR2与SQSTM1/p62蛋白空间位置相近但未严格共定位,提示NDR2不直接位于自噬体上,而是间接调控自噬过程。
ATG9A在HBEC中的亚细胞定位转变依赖于NDR2
自噬相关蛋白9A(ATG9A)是一种定位于高尔基体、内吞体等膜结构的跨膜蛋白,对于自噬体形成的早期阶段——吞噬泡(phagophore)的扩增至关重要。在正常培养条件下,ATG9A主要位于高尔基体区域。血清剥夺诱导ATG9A从高尔基体向细胞质中转运,形成分散的囊泡,这与自噬体数量增加相一致。然而,在NDR2敲低的细胞中,无论是否存在血清剥夺,ATG9A均均匀分布于高尔基体和细胞质中,失去了应激诱导的重新定位。免疫共沉淀实验证实了NDR2与ATG9A之间存在物理相互作用。值得注意的是,ATG9A的氨基酸序列中包含NDR2的共识磷酸化 motif(HxRxxS/T),提示NDR2可能通过磷酸化ATG9A来调控其囊泡运输。同时敲低NDR2和ATG9A对SQSTM1/p62蛋白水平和斑点数量的影响与单独敲低NDR2相似,没有叠加效应,支持它们作用于同一通路。
NDR2或ATG9A的敲低均导致了高尔基体结构的碎片化。在对照细胞中,高尔基体呈现凝聚或延伸状态;而NDR2敲低后,无论在正常还是血清剥夺条件下,高尔基体碎片化的细胞比例显著增加。ATG9A敲低也引起类似但程度较轻的高尔基体碎片化。用氯喹(CQ)抑制自噬同样引起高尔基体碎片化,提示自噬缺陷可能是导致高尔基体结构异常的原因。高尔基体作为细胞内膜运输的中心枢纽,其结构的完整性对于自噬所需的膜脂和蛋白质供应至关重要。
伤口愈合实验表明,血清剥夺降低了HBEC细胞的迁移速度和高尔基体向迁移前沿的定向重排(定义为高尔基体位于细胞核朝向伤口90度角范围内)。NDR2或ATG9A的敲低进一步显著减少了具有定向高尔基体的细胞比例,并降低了细胞迁移速度。抑制自噬(CQ处理)也降低了迁移速度,其效应与NDR2敲低类似,且CQ处理NDR2敲低细胞没有产生额外影响,说明NDR2和ATG9A可能通过调控自噬来促进细胞迁移。此外,NDR2和/或ATG9A的缺失减少了膜定位的N-钙粘蛋白(N-cadherin),使其在核周区域积累,这可能影响了细胞间的粘附特性。细胞骨架分析显示,NDR2敲低影响了丝状伪足(filopodia)的形成,但不改变波形蛋白(vimentin)或微管蛋白(tubulin)的整体结构。
本研究揭示了NDR2激酶在NSCLC细胞应对血清剥夺应激中的一个新颖且关键的作用。研究发现,在营养匮乏条件下,NDR1蛋白表达被抑制,而NDR2则被稳定或激活,成为调控自噬的主要NDR激酶。NDR2通过一个涉及LC3和ATG9A的间接机制促进自噬。具体而言,NDR2可能通过调控YAP-1等转录因子影响LC3的表达,并通过与ATG9A相互作用,磷酸化其特定位点,从而指导ATG9A囊泡从高尔基体向吞噬泡形成位点的运输,这对于自噬体的正常生成至关重要。NDR2或ATG9A的缺失会导致ATG9A的错误定位、高尔基体碎片化、自噬体生成减少以及溶酶体 cargo 降解缺陷。
更重要的是,本研究将NDR2-ATG9A轴的功能与癌细胞的迁移行为联系起来。在迁移过程中,细胞需要建立前端-后端极性,其中高尔基体向细胞前缘的重排对于定向分泌和细胞运动至关重要。NDR2和ATG9A的缺失破坏了饥饿条件下高尔基体的定向重排,并显著抑制了细胞迁移。这种迁移缺陷可能与自噬过程受损导致的粘附斑(focal adhesion)和整合素(integrin)等迁移相关分子的循环利用障碍有关,类似于在其他研究中观察到的现象。
综上所述,这项研究阐明了NDR2在NSCLC中一种不依赖于经典Hippo通路的全新功能:响应营养应激,通过调控LC3和ATG9A促进自噬,进而维持高尔基体功能完整性和驱动细胞迁移。NDR2-ATG9A通路是连接营养匮乏、自噬激活和癌细胞迁移的重要桥梁。这些发现不仅增进了我们对NSCLC进展机制的理解,而且提示NDR2和/或ATG9A可能作为预测NSCLC转移潜能的生物标志物,以及未来开发针对肿瘤代谢应激适应和转移干预策略的潜在靶点。
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