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人源肠道类器官单层模型的建立及其在药物吸收预测中的应用
《Scientific Reports》:Robust and reproducible human intestinal organoid-derived monolayer model for analyzing drug absorption
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年04月04日 来源:Scientific Reports 3.8
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为解决传统体外模型生理相关性不足、重复性差的问题,Chugai制药与北海道大学团队开发了人源十二指肠类器官衍生的单层模型。该模型通过逐步优化培养条件,实现了紧密屏障功能、药物转运体(如P-gp/ABCB1、BCRP/ABCG2)及代谢酶(CYP3A4)的高表达,并验证了核受体(PXR、VDR)活性。19种上市药物的渗透性与人体吸收分数(Fa)相关性达R2=0.88,结合建模与模拟(M&S)方法,9种药物中7种的FaFg预测值误差在1.5倍内。这一模型为临床前-临床转化提供了更可靠的预测工具。
药物口服吸收的预测是药物开发的关键环节,但现有体外模型如Caco-2细胞缺乏代谢酶和核受体功能,且存在种属差异。肠道类器官虽能模拟生理状态,但培养条件复杂、重复性差。如何建立兼具生理相关性和稳定性的模型,成为行业痛点。
Chugai制药与北海道大学的研究团队在《Scientific Reports》发表研究,通过四步优化策略开发了人源十二指肠类器官衍生的单层模型。该研究从手术切除的正常十二指肠组织中分离隐窝并培养类器官,通过筛选消化酶(TrypLE)、细胞外基质(iMatrix-511/纤连蛋白)、培养基成分(含AlbuMAX的WENRAYg+IF培养基)及分化条件(保留EGF的ENAg培养基),最终建立可适应多供体的模型。关键技术包括类器官培养、Transwell单层构建、TEER(跨上皮电阻)检测、CYP3A活性分析(Luciferin-IPA法)及LC-MS/MS药物代谢评估。
??结果部分??
??模型开发与优化??:TrypLE消化联合iMatrix-511/纤连蛋白涂层显著提升细胞增殖和TEER值(图2)。AlbuMAX的添加解决了多供体差异,使TEER值提高2倍并增强FaSSIF(空腹模拟肠液)耐受性(图5)。维生素D3(VD3)将CYP3A4表达提升至原代肠细胞水平(图5h)。
??功能验证??:模型表现出紧密连接(ZO-1)、微绒毛结构(图6a-d)及功能性药物转运体(P-gp抑制后地高辛吸收增加3倍,图6f)和代谢酶(CYP3A底物咪达唑仑代谢被ABT抑制,图6j)。核受体PXR经利福平激活后,CYP3A4表达上调5倍(图6l)。
??重现性与个体差异??:模型TEER的批内变异系数仅8.6%(图7a),但不同供体的类器官在药物转运体(如ABCB1)和代谢酶表达上存在差异,导致P-gp底物(地高辛)和CYP3A底物(咪达唑仑)的吸收谱不同(附图8)。
??人体吸收预测??:19种药物的渗透性与Fa值高度相关(R2=0.88,图8e)。通过M&S方法整合CYP3A活性差异(体外/体内比0.24),7/9种药物(包括CYP3A底物)的FaFg预测误差在1.5倍内(图8f)。
??结论与意义??
该研究建立了首个可量化预测FaFg的人源肠道单层模型,解决了传统模型在代谢和转运体功能上的缺陷。通过AlbuMAX和VD3优化,模型兼具屏障稳定性与生理相关性,且适配多供体来源。结合M&S方法,其预测准确性超越Caco-2模型,尤其适用于CYP3A和P-gp底物。未来,该模型可助力复杂药物(如PROTACs)的吸收评估,降低临床失败风险。研究还揭示了个体化差异对药物吸收的影响,为精准医疗提供了新工具。
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