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减毒禽副鸡杆菌2019/HB64-40株的构建及其作为鸡传染性鼻炎活疫苗候选株的潜力评估
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年06月11日 来源:Veterinary Research 3.7
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本研究针对禽副鸡杆菌(Av. paragallinarum)引起的鸡传染性鼻炎(IC)现有灭活疫苗存在交叉保护不足等问题,通过Tn5-Kan转座子构建突变库,筛选出ksgA基因缺陷的减毒株2019/HB64-40。该株生物膜形成能力下降(OD<4×ODc)、血凝效价降低至21 ,动物实验显示免疫组临床评分仅0.1(对照组2.1),提供90%同源保护率,为开发新型活疫苗奠定基础。
鸡传染性鼻炎(Infectious Coryza, IC)是困扰全球家禽业的顽疾,由禽副鸡杆菌(Avibacterium paragallinarum)引发,典型症状包括面部肿胀、鼻腔分泌物增多,导致蛋鸡产蛋下降和肉鸡生长迟缓。当前防控主要依赖灭活疫苗,但存在两大痛点:一是血清型间交叉保护有限(如A1-A4型间保护率低),二是疫苗失效事件频发(中国部分地区免疫后仍暴发疫情)。更棘手的是,灭活疫苗含细菌脂多糖等成分,易引发接种不良反应。这些困境催生了研究者对新型疫苗的探索——减毒活疫苗因其模拟自然感染途径、能诱导全面免疫应答的优势,成为破局希望。
扬州大学的研究团队独辟蹊径,选择从细菌的"生存技能"入手。生物膜(biofilm)作为细菌的"防护盾",与毒力、耐药性密切相关。研究者利用Tn5-Kan转座子对野生株2019/HB64进行随机突变,通过结晶紫染色法(OD600
检测)筛选到生物膜形成能力骤减的突变株2019/HB64-40。染色体步移技术锁定其突变基因为ksgA——该基因编码的16S rRNA腺苷二甲基转移酶是核糖体30S亚基组装的关键"质检员"。这把"基因剪刀"不仅剪断了生物膜形成链(OD值从野生株>4×ODc降至≤2×ODc),还意外削弱了细菌的"黏附能力":血凝效价从28
暴跌至21
,但DF-1细胞黏附实验显示其黏附率未显著改变。
研究团队通过SPF鸡模型展开攻毒试验,设计了三重防线验证减毒效果:临床评分、病理观察和排菌检测。未免疫组在攻毒后2天全部出现严重症状(面部肿胀评分3分),而突变株免疫组仅1/10出现轻微症状(评分0.1)。解剖可见典型差异:野生株攻毒组眶下窦充满黄色干酪样渗出物,气管黏膜出血;免疫组则仅见轻微充血。更关键的是,qPCR检测显示免疫组排菌量断崖式下降——攻毒5天后排菌量(9.50×102
copies)较对照组(5.91×104
copies)降低98%。组织病理学进一步证实,免疫组仅见气管纤毛局部黏附,而对照组出现黏膜下层水肿伴巨噬细胞浸润。
这项发表于《Veterinary Research》的研究首次将ksgA基因与禽副鸡杆菌毒力关联,揭示核糖体甲基化修饰影响病原体定植的新机制。研究构建的2019/HB64-40株展现三大应用优势:安全性(连续传代20代性状稳定)、有效性(同源保护率达90%)和便捷性(单次免疫即可)。虽然尚未验证跨血清型保护,但其在中国主要流行血清型A中的优异表现,为替代现行多价灭活疫苗提供可能。未来研究需关注该候选株与野毒株的竞争性定植关系,以及免疫持续期等产业化关键参数。
关键技术方法
研究结果
Characterization of the Av. paragallinarum mutant strain 2019/HB64-40
突变株生物膜形成能力显著减弱(p<0.05),血凝效价降低4个滴度,生长曲线显示其对数期延后且平台期OD600
值降低20%。
Pathogenicity of the Av. paragallinarum mutant in chickens
攻毒3天后野生株组发病率100%,突变株组仅26.7%(4/15);7天后突变株组排菌量(2.17×104
copies)较野生株组(5.45×104
copies)降低60%。
Protective efficacy of the attenuated live vaccine candidate strain 2019/HB64-40
免疫组体重增长与对照组无差异(p>0.05),攻毒后临床评分降低96%(0.1 vs 2.5),眶下窦病变发生率下降70%。
讨论与意义
该研究突破现有灭活疫苗的技术天花板,首次将核糖体装配调控基因ksgA作为减毒靶点。突变株通过削弱生物膜形成——这种"去装甲"策略既降低细菌环境抗性,又保留免疫原性关键表位。值得注意的是,虽然血凝素(HA)效价降低可能影响部分血清型识别,但在同源血清型中仍能激发有效保护,提示除HA外可能存在其他保护性抗原。研究为禽副鸡杆菌疫苗开发提供新范式:通过精准扰动细菌基础代谢通路(如rRNA甲基化)而非传统毒力因子,实现安全性与免疫原性的平衡。未来可探索该策略在其他禽病原体(如鸡毒支原体)中的应用,或结合CRISPR技术构建多基因减毒株以增强交叉保护。
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