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磁性靶向胎盘间充质干细胞(PL-MSCs)通过氧化应激与炎症抑制改善顺铂诱导急性肾损伤(AKI)的治疗效果
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年09月19日 来源:International Journal of Nanomedicine 6.5
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本研究创新性地利用聚多巴胺包被的四氧化三铁纳米颗粒(Fe3O4@PDA NPs)标记胎盘间充质干细胞(PL-MSCs),结合外部磁场引导,显著提升干细胞在顺铂(Cis)诱导急性肾损伤(AKI)小鼠模型中的靶向归巢能力和治疗效果。结果表明,磁性靶向技术通过抑制氧化应激(ROS、MDA、8-OHdG)和炎症反应(TNF-α、IL-1β等),减少细胞凋亡(TUNEL),促进增殖(Ki67),从而有效改善肾功能(BUN、Cr)和组织修复。
急性肾损伤(AKI)以肾功能突然丧失为特征,目前缺乏有效治疗方法。胎盘来源的间充质干细胞(PL-MSCs)在再生医学中展现出潜力,尤其在AKI治疗方面。然而,如何优化PL-MSCs的治疗效果仍是关键挑战。磁性靶向技术是一种潜在的优化策略。通过使用氧化铁标记的MSCs并结合外部磁场,可提高细胞的归巢能力,从而增强体内细胞治疗效果。
本研究用聚多巴胺包被的四氧化三铁纳米颗粒(Fe3O4@PDA NPs)对PL-MSCs进行24小时标记,并检测细胞效率与存活率。将条件性永生化的小鼠肾小管内皮细胞(mRTECs)与顺铂(Cis)共孵育后,再与非标记或NP标记的MSCs共培养,评估NP标记MSCs对mRTEC的保护作用。在体内实验中,对顺铂诱导的AKI小鼠注射非标记或NP标记的MSCs,并施加或不施加外部磁场,收集血液和组织样本以评估肾功能和组织损伤。
研究证实MSCs或MSC-NP能显著改善顺铂诱导的mRTEC损伤。此外,在外部磁场作用下的NP标记MSCs(磁性靶向MSCs)提高了其在AKI小鼠肾组织中的归巢能力,与单独使用MSC或NP标记MSC治疗相比,肾功能得到进一步改善。磁性靶向MSCs通过抑制氧化应激和炎症、减少细胞凋亡并促进细胞增殖来减轻肾损伤。
磁性靶向技术可增强PL-MSCs对顺铂诱导的小鼠AKI的治疗效果,表明磁性靶向MSCs有望成为治疗顺铂诱导AKI的潜在策略。
顺铂(Cis)是一种广泛用于治疗多种实体瘤的化疗药物,但其临床应用常因多器官严重不良反应而受限。约三分之一接受顺铂治疗的患者可能出现肾毒性,包括急性肾损伤(AKI)。顺铂可诱导肾小管上皮细胞发生凋亡、炎症反应和纤维化。尽管现有治疗手段如液体管理和持续血液净化疗法可供选择,但目前尚无特异性药物治疗顺铂诱导的AKI。
间充质干细胞(MSCs)作为组织工程和再生医学中的重要细胞来源,存在于人体骨髓、皮肤、脐带组织和脂肪组织中。越来越多的实验证据表明,MSCs可用于改善顺铂诱导的肾损伤,保护肾小管结构和功能。然而,从骨髓等组织中分离MSCs的过程具有侵入性,且常需多次采样才能获得足够数量。胎盘来源MSCs(PL-MSCs)因其在分娩后易于获取、细胞产量高、增殖能力强、免疫原性低等优点,成为再生细胞治疗的有力工具。PL-MSCs比成体骨髓MSCs具有更强的扩增潜力和免疫调节能力。临床前研究表明,PL-MSCs可分泌免疫调节和血管生成细胞因子,有助于组织愈合和重塑。目前,PL-MSCs已在多种疾病动物模型中得到研究,包括多发性硬化、勃起功能障碍、冠状病毒病、慢性肺损伤和肾脏疾病。因此,PL-MSCs可能成为AKI细胞治疗的重要来源。
MSCs的治疗效果很大程度上取决于成功到达靶点部位的细胞数量。静脉输注后,仅少部分细胞能够到达目标组织,表明MSCs的归巢效率较低。因此,寻找有效的细胞递送方法以增强细胞向靶点归巢至关重要。
纳米技术的发展为解决这一公共卫生问题提供了新方法。磁性靶向递送作为一种新兴递送技术,主要包括磁性颗粒、载荷和载体三部分,近年来日益受到关注。在该系统中,载体可响应特定磁场并被引导至靶点,从而增加靶点处药物或细胞的浓度,同时减少毒性和脱靶副作用。目前最广泛使用的磁性载体是四氧化三铁纳米颗粒(Fe3O4 NPs),其具有磁性、低毒性和高生物相容性。Fe3O4 NPs在癌症治疗中已被广泛应用,无论是作为抗癌药物的磁性靶向递送载体,还是作为热疗剂以增强化疗药物疗效。聚多巴胺包被的Fe3O4 NPs(Fe3O4@PDA NPs)表现出增强的超顺磁性、更好的生物相容性和更低的毒性,因此更适用于临床治疗。用Fe3O4@PDA NPs标记特定细胞可增加细胞从血液向肾脏靶点的迁移和分布。研究表明,磁性靶向引导的MSCs可用于修复其他损伤,如软骨损伤、脊髓损伤和心肌梗死。此外,有研究显示磁性靶向PL-MSCs可最大化其对胶质瘤的治疗效果。
本研究旨在评估一种非侵入性方法,即通过标记Fe3O4@PDA NPs刺激细胞到达损伤部位,从而促进MSCs在AKI小鼠损伤部位的招募,以增强PL-MSCs的再生能力。同时,我们评估了Fe3O4@PDA标记MSCs对小鼠AKI模型的治疗效果。
人PL-MSCs的培养方法如前所述。所有操作均经吉林大学中日联谊医院研究伦理委员会批准,并遵循《赫尔辛基宣言》。PL-MSCs培养于含10%胎牛血清(FBS)的α-MEM培养基中。条件性永生化的小鼠肾小管内皮细胞(mRTECs)购自上海细胞生物学研究所,培养于含10% FBS的RPMI 1640培养基中。所有细胞均置于37°C、5% CO2的培养箱中培养。
Fe3O4@PDA NPs的合成与表征如前所述。将PL-MSCs培养于六孔板中,细胞汇合后更换培养基,并分别加入25–200 μg/mL的Fe3O4@PDA NPs,孵育24小时。用PBS冲洗去除多余NPs。
PL-MSCs培养至80%汇合时,加入不同浓度NPs孵育24小时。标记后的MSCs用4%多聚甲醛固定30分钟,按试剂盒说明进行普鲁士蓝染色,显微镜下观察。
PL-MSCs分别与25–200 μg/mL的Fe3O4@PDA NPs共孵育24小时,采用CCK8检测细胞活性。另有一部分细胞标记后继续培养7天,再用CCK8法评估细胞增殖。选择细胞毒性最低的NP浓度进行后续实验。
标记后的PL-MSCs用2.5%戊二醛固定过夜,PBS清洗后用1%锇酸后固定2小时,乙醇梯度脱水后采用透射电镜(TEM)观察。
PL-MSCs用Fe3O4@PDA NPs标记24小时后,与抗体CD73、CD45、CD34、CD19、CD11b、CD90、HLA-DR、CD105共同孵育,流式细胞术分析表型。同时,通过成脂和成骨诱导培养基分别培养21天和28天,油红O和阿利新红染色评估多向分化潜能。
mRTECs用2.5 μg/mL顺铂处理6小时,之后更换正常培养基。另外两组在顺铂处理后分别与非标记或NP标记的MSCs在Transwell中共培养24小时。MSCs接种于上室,mRTECs接种于下室。
共培养后收集mRTECs,用Annexin V/PI染色检测凋亡,ROS检测试剂盒检测活性氧水平,流式细胞术分析。
mRTECs接种于24孔板,顺铂处理6小时后与MSCs或MSC-NP共培养24小时,CCK8法评估细胞生长抑制。
收集细胞上清和细胞沉淀,BCA法测蛋白浓度,ELISA试剂盒检测LDH、GSH和MDA水平。
6–8周龄C57BL/6雄性小鼠单次腹腔注射顺铂(18 mg/kg)诱导AKI。24小时后随机分为四组,分别尾静脉注射:PBS、MSC、MSC-NP、磁性靶向MSC(MSC-NP-MAG),并在肾区下方放置磁铁(1.2 T)20分钟。第7天处死小鼠,收集血液、尿液和肾脏样本。为追踪MSCs归巢,部分小鼠注射Cy5.5标记的MSCs,24小时后取肾进行小动物成像。
采用试剂盒检测血尿素氮(BUN)和肌酐(Cr)水平。
Luminex多重检测法测定血清中TNF-α、IL-1β、IL-2、IL-4、IL-5、IL-10、IL-12、IFN-γ等炎症因子水平。
肾组织切片进行HE和PAS染色,显微镜下观察并盲法评估。
肾组织切片脱蜡、水化、抗原修复后,与一抗8-OHdG、CD3、CD11b、CD68、Ki67、KIM-1、TIMP-1等孵育,DAB显色。细胞水平8-OHdG检测方法类似。
采用TUNEL检测试剂盒评估肾组织细胞凋亡,阳性细胞计数进行组间比较。
数据以均值±标准差表示,SPSS软件进行统计分析。正态性和方差齐性检验后,t检验用于两组比较,多组比较采用单因素ANOVA及Bonferroni检验。P<0.05认为有统计学意义。
Fe3O4@PDA NPs的形态和大小与既往研究一致。普鲁士蓝染色显示,未标记MSCs无蓝色颗粒,而NP标记组(50 μg/mL和100 μg/mL)几乎全部细胞呈阳性,且50 μg/mL组染色强于更高浓度组。透射电镜显示NPs位于胞质内内体样结构中。
CCK8分析显示,NP浓度低于100 μg/mL时,MSC-NP与未标记PL-MSCs的活性无显著差异;浓度≥150 μg/mL时则出现细胞毒性。细胞增殖实验表明,25和50 μg/mL NP浓度对MSCs增殖无显著影响。因此后续实验选用50 μg/mL NP浓度。
流式细胞术和分化实验表明,NP标记并未改变MSCs的表面标志物表达和多向分化能力,说明NPs对PL-MSCs无毒性且不影响其干细胞特性。
在体外共培养实验中,与顺铂组相比,MSCs或MSC-NP共培养的mRTECs存活率显著提高(约2.3倍),LDH释放显著减少,细胞凋亡率显著降低。两组之间无显著差异,表明MSCs可能通过旁分泌机制发挥保护作用。
氧化应激指标显示,顺铂组GSH水平下降、MDA水平上升,而MSC和MSC-NP组可逆转这一趋势;ROS水平在顺铂组显著升高,MSC或MSC-NP处理后显著降低;8-OHdG表达在顺铂组升高,治疗组下降。进一步证实氧化应激参与顺铂肾毒性,且MSC-NP具有抗氧化潜力。
在动物实验中,与正常组相比,PBS组小鼠存活率下降(53%),而各MSC治疗组存活率均改善,磁性靶向组存活率最高(94%)。肾重测量显示,磁性靶向组对顺铂所致肾重减轻的防止效果最佳。血清生化指标显示,AKI小鼠BUN和Cr水平显著升高,各MSC治疗组均能降低这两项指标,磁性靶向组效果最显著。肾组织GSH和MDA水平变化进一步支持磁性靶向MSCs具有更强抗氧化能力。
小动物活体成像显示,磁性靶向组小鼠肾脏中Cy5.5标记MSCs的聚集量显著高于其他组,说明外部磁场有效促进了MSCs向肾组织的归巢。
组织学分析(HE和PAS染色)表明,顺铂组肾组织出现明显损伤如上皮细胞脱落、管型形成等,MSC和MSC-NP组损伤减轻,磁性靶向组肾组织形态接近正常。免疫组化显示损伤标志物KIM-1和TIMP-1在顺铂组表达上调,MSC和MSC-NP组部分减少,磁性靶向组几乎完全消除。8-OHdG在肾组织中的表达变化与体外结果一致。
炎症细胞浸润分析显示,顺铂组CD68+巨噬细胞、CD3+ T细胞和CD11b+ NK细胞数量增加,MSC和MSC-NP组上述细胞数量减少,磁性靶向组抑制效果最强。血清细胞因子检测表明,磁性靶向组IL-1β、IL-2、IL-5、IL-12、IFN-γ、TNF-α等炎症因子水平均低于其他治疗组,说明其抗炎效果更佳。
增殖与凋亡分析显示,顺铂组Ki67+细胞减少、TUNEL+细胞增加,MSC治疗组可逆转这一趋势,且磁性靶向组效果最为显著,表明其更能促进细胞增殖、抑制凋亡。
综上所述,磁性靶向MSCs通过提高损伤局部MSCs数量、增强旁分泌效应、释放更多具有免疫调节和抗炎作用的可溶性因子,从而在修复顺铂诱导的AKI方面表现出优于单纯MSCs或MSC-NP的治疗效果。
本研究成功利用外部磁场实现标记MSCs在AKI小鼠肾中的靶向递送。磁性NP标记结合外部磁场治疗可增加PL-MSCs在损伤部位的聚集,增强其旁分泌作用,释放更多具有免疫调节和抗炎作用的因子,从而改善恢复效果。磁性靶向是一种有前景的技术手段,可通过增强PL-MSCs在损伤部位的聚集能力来改善顺铂诱导的肾毒性。
王克和赵晔为共同第一作者。无利益冲突声明。
本研究所有数据均包含在本文中。
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