综述:脂肪源性干细胞的多组学特征与表观遗传修饰
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时间:2025年09月27日
来源:Journal of Biological Chemistry 3.9
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本综述系统阐述了脂肪源性干细胞(ADSCs)的多组学(转录组、蛋白质组、脂质组)特征及其表观遗传调控机制(DNA甲基化、组蛋白修饰、非编码RNA),揭示了ADSCs分化潜能(成脂/成骨/神经等)的分子基础,为再生医学中细胞命运精准调控提供了前沿视角和潜在靶点。
Omics Characteristics and Epigenetic Modifications of Adipose-Derived Stem Cells
脂肪源性干细胞(ADSCs)作为多能干细胞,具有自我更新和分化为多种细胞谱系的能力,包括脂肪细胞、成骨细胞、神经元和平滑肌细胞,在组织再生中展现出巨大潜力。近年来,多组学技术的进步通过转录组、蛋白质组和脂质组分析深化了我们对ADSC分子特征的理解。此外,表观遗传修饰——在不改变DNA序列的情况下介导基因表达的可遗传变化——在ADSC的多系分化过程中扮演关键角色。
Omics-based analyses characterize ADSC features in transcriptome, proteome and lipidome
组学研究从转录组、蛋白质组和脂质组维度全面描绘了ADSC的特征。例如,单细胞RNA测序(scRNA-seq)揭示了ADSC群体的高度异质性,不同亚群具有独特的标记基因表达和分化潜能。比较分析显示,ADSC与骨髓源性干细胞(BMSCs)等其他干细胞共享部分间充质谱系核心签名(如THY1/CD90、NT5E/CD73),但也存在显著差异:ADSC上调基因多与肌生成相关(如FN1、SPP1、VEGFA),而BMSCs则富集于血管生成和骨生成相关通路。
肥胖和性别显著影响ADSC的转录组:肥胖患者皮下ADSC中促 adipogenic 和促炎信号基因上调;雄性小鼠ADSC高表达Hox(abc)1–8并增强RAAS信号,而雌性则高表达Hox(acd)9–13和神经发育相关基因(如ANKK1)。
蛋白质组分析表明,ADSC具有较高的基础代谢活性,富集于生物氧化和核苷碱基合成通路,而BMSCs则突出于细胞外基质(ECM)组织。ADSC来源的外泌体携带免疫调节相关蛋白,反映其源细胞的信号主导途径。缺氧条件下(1% O2),猪ADSC上调糖酵解蛋白(ALDOC、GAPDH、PGK1等)和机械转导蛋白(MAPK1、ZYX),适应低氧环境。
脂质组研究仍以描述性为主。ADSC具有独特且多样的磷脂谱,如磷脂酰甘油(PG)40:7和磷脂酰乙醇胺(PE)O-36:3为其特有。兔ADSC与肌肉干细胞(MDSC)相比,在未分化状态下富含N-酰基磷脂酰乙醇胺(NAPE)、磷脂酰丝氨酸(PS)和PE特定物种,这些脂质涉及膜完整性、自噬和线粒体生物发生。
Epigenetic regulations in ADSCs
表观遗传机制包括DNA甲基化、组蛋白修饰、染色质重塑和非编码RNA(如microRNA),共同调控ADSC的分化。
Epigenetic control of ADSC adipogenesis
DNA甲基化水平与成脂分化能力负相关:天花板培养来源的前脂肪细胞(ccdPAs)具有更低的PPARγ、FABP4和LEP基因启动子CpG甲基化和更高的H3K4me3富集。ZNF521通过抑制EBF1/TET2通路促进DNA甲基化,从而抑制成脂分化。2型糖尿病(T2D)患者的ADSC表现出独特的“代谢记忆”DNA甲基化模式,影响胰岛素抵抗和免疫过程基因。肥胖相关肥厚性脂肪组织显示CpG甲基化增加,涉及胰岛素抵抗和脂解相关基因。
组蛋白修饰如H2B O-GlcNAcylation介导AMPKα1对IDH2表达的正向效应,促进棕色脂肪生成。组蛋白乙酰酶抑制剂C646意外提升H3K9乙酰化和TIP60/PCAF表达,促进成脂。腹部与臀股脂肪库的ADSC显示组蛋白标记(H3K4me3、H3K27me3等)的差异富集,影响库特异性基因(如INHBA、TIMP1)表达。三维染色质构象分析进一步发现增强子-启动子环路(如HOXA、BDNF、IL33)调控库特异性分化。
microRNA中,miR-27b、miR-138通过靶向LPL抑制成脂,miR-27a-3p/b-3p介导维生素D3的抗成脂效应。miR-138还靶向EID-1核心gulator。反之,miR-30c通过共抑制PAI-1(SERPINE1)和ALK2(ACVR1)促进成脂。
Epigenetic control of ADSC osteogenesis
TET介导的DNA去甲基化(5mC→5hmC)促进成骨:TET1/2上调增强成骨基因表达,TET2缺失小鼠骨密度降低。糖尿病骨质疏松(DOP)环境通过Dnmt3a升高抑制Wnt/β-catenin信号,而Dnmt3a下调可挽救成骨潜能。LncRNA-AK137033通过调节sFrp2启动子甲基化抑制Wnt通路。衰老ADSC的5hmC水平和成骨能力下降,5-氮杂胞苷处理可提升TET2/TET3表达和成骨分化。
组蛋白甲基转移酶EZH2(催化H3K27me3)抑制成骨,而其抑制则激活细胞周期抑制蛋白和ECM生产。组蛋白乙酰化如H3K18ac(由p300催化)促进成骨基因转录,HDAC抑制剂MI192增强RUNX2、COL1、OCN表达和矿化。机械拉伸和基质刚度通过降低DNA甲基化(如GNASXL启动子)和上调组蛋白去甲基酶KDM3B促进成骨。TiO2纳米管通过激活H3K4甲基化、降低H3K9甲基化和增强乙酰化促进成骨。
非编码RNA中,lncRNA-PAGBC作为miR-133b的海绵解除对Runx2的抑制;miR-375通过靶向DEPTOR和YAP1激活Akt信号;miR-4699抑制DKK1和TNFSF11;miR-26a靶向GSK3β;miR-196a可能通过抑制HOXC8促进成骨。反之,miR-100靶向BMPR2,miR-24-3p靶向TRIB3,miR-137靶向NOTCH1和LGR4并刺激RANKL,均抑制成骨。
MicroRNAs that simultaneously affect ADSC adipogenesis and osteogenesis
部分miRNA双向调控谱系抉择:miR-22抑制成脂但促进成骨;miR-21通过抑制SPRY2增强ERK-MAPK信号,促进 both 分化;miR-17-5p和miR-106a靶向BMP2,抑制成骨(下调TAZ、MSX2、Runx2)但促进成脂(上调C/EBPα、PPARγ)。
Epigenetic modifications on other differentiation pathways and functions of ADSCs
ADSC亦具神经分化潜能:NES增强子去甲基化和组蛋白标记动态变化(H3K4me3、H3K9me3、H3K27me3)调控其表达。HDAC5和H3K9me3在球体形成和神经分化末期起主要作用。Hoxa-5去甲基化及其过表达诱导神经元分化。miR-124靶向RHOA促进神经转分化标记(NSE、Tuj-1、GFAP)表达。GDNF过表达通过上调Mta1和Hes1促进许旺样细胞分化,可能助力神经再生。
平滑肌分化中,TGF-β1和miR-378a-3p模拟物诱导代谢重编程(线粒体电位升高、胆固醇增加);miR-145通过下调KLF4增强平滑肌基因表达。
肝向分化时,let-7f抑制肝细胞标记(HNFα、ALB、AFP)表达,而其抑制则促进分化。miR-27b增强肝分化并抑制炎症和纤维化。
免疫调节方面,DNA去甲基剂5-氮杂-2′-脱氧胞苷(5-aza-dC)上调HLA-G1/G3表达,可能增强ADSC的免疫抑制能力。
Epigenetic modifications in senescence and apoptosis of ADSCs
体外扩增引发ADSC衰老,伴随重复性DNA甲基化变化和抑制性组蛋白标记(H3K9me3增加、H3K4me3减少)。5-氮杂胞苷处理可逆转衰老表型:降低氧化应激、DNA甲基化和ROS,提升SOD活性和BCL-2/BAX比。缺氧预处理通过降低全局5hmC水平改善动脉狭窄模型猪ADSC的功能。
miR-486-5p通过靶向SIRT1诱导复制性衰老,抑制增殖和分化;抑制miR-34a则通过激活SIRT1减少衰老。miR-301a通过下调ASK1减弱移植后凋亡,提升细胞治疗疗效。
ADSC的可塑性受到表观遗传网络的精密调控,该网络整合内在程序与外部信号(如年龄、代谢状态、物理刺激),决定细胞命运。库特异性、代谢记忆和表观遗传设定点(epigenetic setpoint)概念凸显了个性化治疗的必要性。未来需借助单细胞多组学和AI整合分析破解组合式表观遗传密码,并探索代谢-表观遗传crosstalk(如底物可用性调控修饰酶活)这一新范式。最终,通过表观遗传调控(如去甲基化药物、miRNA靶向)优化ADSC功能将推动再生医学的精准应用。
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